蛋白表達的測定是分子生物學研究中的重要環節，其使用步驟會因所選方法的不同而有所差異。
 

　　1.樣品制備
 

　　-取樣與均質化：根據實驗需求選取合適的生物樣本(如細胞、組織或培養液上清)，通過離心、研磨等方式獲得均勻的裂解物。若涉及分泌型蛋白，需分離上清以避免胞內雜質干擾。
 

　　-定量標準化：使用BCA法或其他蛋白定量試劑盒確定總蛋白濃度，確保后續實驗加樣量的一致性。
 

　　2.電泳分離(以SDS-PAGE為例)
 

　　-凝膠配制：根據目標蛋白分子量選擇合適濃度的聚丙烯酰胺凝膠，加入SDS使蛋白質帶負電荷并展開為線性結構。
 

　　-上樣與跑膠：將處理好的樣品加載至凝膠孔中，在恒定電流下進行電泳，實現按分子量大小的區帶分離。
 

　　-轉膜：采用濕轉或半干轉法將凝膠中的蛋白轉移至PVDF/NC膜上，便于后續檢測。
 

　　3.免疫檢測(Western Blot流程)
 

　　-封閉：用脫脂奶粉或牛血清白蛋白溶液封閉非特異性結合位點，減少背景噪音；
 

　　-抗體孵育：依次加入一抗(針對目標蛋白)、HRP標記的二抗，通過抗原-抗體特異性結合實現信號放大；
 

　　-顯色成像：使用ECL化學發光底物曝光X光片或直接用成像系統采集條帶信息。
 

　　4.數據分析
 

　　-定量分析：通過灰度掃描軟件對目的條帶與內參(如β-actin)進行光密度比值計算，評估相對表達水平；
 

　　-質譜驗證：對于復雜混合物，可切割膠條進行質譜鑒定以確認蛋白身份。
 

　　蛋白表達的作用原理：
 

　　1.基因克隆與載體構建：將目標蛋白對應的基因序列插入到特定的表達載體中，這個載體通常包含啟動子、終止子等調控元件以及篩選標記。然后，把重組后的質粒或其他形式的載體導入宿主細胞內。常見的宿主包括細菌(如大腸桿菌)、酵母、昆蟲細胞和哺乳動物細胞等。
 

　　2.轉錄過程：一旦載體進入宿主細胞，目標基因會在啟動子的作用下被轉錄成mRNA。原核生物中，由于沒有細胞核結構，轉錄和翻譯幾乎是同時進行的；而在真核生物中，轉錄主要發生在細胞核內，之后mRNA才會轉移到細胞質中進行翻譯。
 

　　3.翻譯過程：在核糖體的作用下，以mRNA為模板，按照堿基互補配對原則，將遺傳密碼轉換為氨基酸序列，逐步合成多肽鏈，形成具有特定空間結構的蛋白質。
 

　　4.后處理與修飾：某些表達系統還能對新生的蛋白質進行翻譯后的修飾，比如糖基化、磷酸化等，這些修飾對于維持蛋白質的功能性和穩定性至關重要。例如，哺乳動物細胞表達系統能夠進行復雜的糖基化和其他類似的修飾，使得到的蛋白更接近天然狀態。